自2012年CRISPR-Cas9技術(shù)問(wèn)世以來(lái)，基因編輯便駛?cè)肓丝燔?chē)道，取得了一系列新突破。如果將CRISPR-Cas9比作能夠破壞目標(biāo)基因的分子剪刀，那么base editor（堿基編輯器）可以稱(chēng)為分子鉛筆，因其能對(duì)單個(gè)核苷酸進(jìn)行替換。2019年開(kāi)發(fā)的prime editor則具有更強(qiáng)大的功能，能夠?qū)蚪M進(jìn)行搜索和替換，堪稱(chēng)分子世界的“文字處理器”。

【資料圖】

開(kāi)發(fā)這些技術(shù)的最終目標(biāo)是修復(fù)人類(lèi)基因中的有害突變。16,000多個(gè)小的缺失變異與人類(lèi)疾病存在因果關(guān)系，理論上可以通過(guò)插入缺失的序列來(lái)修復(fù)。囊性纖維化就是一個(gè)很好的例子，70%的病例由三核苷酸缺失而引起。

為了實(shí)現(xiàn)臨床應(yīng)用，人們需要一種技術(shù)來(lái)準(zhǔn)確、高效且安全地插入序列，避免出現(xiàn)意外的結(jié)果。prime editing系統(tǒng)雖然在治療囊性纖維化等遺傳病上表現(xiàn)出巨大潛力，但目前仍不清楚哪些因素決定了編輯效率。

英國(guó)Wellcome Sanger研究院和愛(ài)沙尼亞塔爾圖大學(xué)的研究人員近日在Nature Biotechnology雜志上發(fā)文稱(chēng)，他們開(kāi)發(fā)出一種新工具，可預(yù)測(cè)將基因編輯的DNA序列成功插入基因組的幾率。

在這項(xiàng)研究中，研究人員試圖系統(tǒng)評(píng)估插入序列的長(zhǎng)度和組成、細(xì)胞系、目標(biāo)位點(diǎn)以及prime editor的不同版本如何影響插入效率。

為此，他們共設(shè)計(jì)了3,604條pegRNA，編碼切口位點(diǎn)上游的插入物，這些插入物的長(zhǎng)度從1nt到69nt不等，且GC含量不同。他們將序列插入兩個(gè)細(xì)胞系（HEK293T和HAP1細(xì)胞）中，靶向四個(gè)目標(biāo)位點(diǎn)（HEK3、EMX1、FANCF和CLYBL）。一周后，他們對(duì)這些細(xì)胞進(jìn)行基因組測(cè)序，觀察編輯是否成功。評(píng)估插入效率的整體策略詳見(jiàn)圖1。

圖1 prime插入效率的高通量測(cè)定

由于插入率的變化跨越了三個(gè)數(shù)量級(jí)，于是研究人員試圖了解相關(guān)的特征，首先是插入物的長(zhǎng)度。他們?cè)贖EK293T細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)了兩個(gè)特點(diǎn)：3和4nt序列的插入率高于其他序列；15-21nt序列的插入率高于周?chē)男蛄小２贿^(guò)在HAP1細(xì)胞中，1-4 nt短序列的插入率并沒(méi)有高于較長(zhǎng)序列。他們將其歸因于錯(cuò)配修復(fù)（MMR）系統(tǒng)，因?yàn)镠EK293T細(xì)胞在MMR上存在部分缺陷。敲除錯(cuò)配修復(fù)基因MLH1的HAP1細(xì)胞也證明了這一點(diǎn)，表明MMR系統(tǒng)阻礙了短序列的插入。

之后，他們分析了prime editing的不同步驟如何影響序列的插入率。他們發(fā)現(xiàn)，若pegRNA中帶有四個(gè)或更多的連續(xù)腺嘌呤，則插入率會(huì)大大下降。此外，prime editing中的另一個(gè)重要步驟是帶有5’ flap（包含野生型序列）和3’ flap（包含插入物）的中間產(chǎn)物之間達(dá)到平衡，而5’ flap核酸酶FEN1及3’ flap核酸酶TREX1和TREX2介導(dǎo)了這種平衡。他們發(fā)現(xiàn)，3’ flap核酸酶TREX1和TREX2抑制了較長(zhǎng)序列的插入。

同時(shí)，插入序列的核苷酸組成和二級(jí)結(jié)構(gòu)也會(huì)影響插入率。研究人員發(fā)現(xiàn)，prime editing系統(tǒng)對(duì)胞嘧啶有著明顯的偏好。插入序列中每增加1%的胞嘧啶，則插入率平均增加2.2%。相反，腺嘌呤和胸腺嘧啶的百分比則降低了各個(gè)位點(diǎn)的插入率。此外，他們還發(fā)現(xiàn)，結(jié)構(gòu)強(qiáng)度更高的序列能夠被更有效地插入。

在此過(guò)程中，他們使用了Twist Bioscience提供的寡核苷酸池。據(jù)Twist介紹，他們獨(dú)特的硅基DNA合成平臺(tái)能夠在單次運(yùn)行中生成超過(guò)一百萬(wàn)條寡核苷酸，對(duì)數(shù)量幾乎沒(méi)有限制，而且寡核苷酸池精準(zhǔn)均一，讓人們對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果充滿(mǎn)信心。此外，實(shí)驗(yàn)中使用的多個(gè)載體和基因片段也是由Twist Bioscience提供的。

在了解影響插入率的多個(gè)因素后，研究人員接下來(lái)想預(yù)測(cè)不同序列在同一位點(diǎn)的插入效率。他們采用了機(jī)器學(xué)習(xí)的方法，挑選出10個(gè)特征來(lái)訓(xùn)練數(shù)據(jù)，包括插入序列的長(zhǎng)度、組成、pegRNA二級(jí)結(jié)構(gòu)和MMR等。這種稱(chēng)為MinsePIE的方法能夠很好地預(yù)測(cè)測(cè)試數(shù)據(jù)的插入效率，相關(guān)性達(dá)到0.68（圖2）。

在現(xiàn)有數(shù)據(jù)上進(jìn)行訓(xùn)練后，他們?cè)谛聰?shù)據(jù)上測(cè)試MinsePIE模型，發(fā)現(xiàn)它能夠準(zhǔn)確預(yù)測(cè)多個(gè)插入序列的成功率。之后，他們還對(duì)預(yù)測(cè)的序列進(jìn)行實(shí)驗(yàn)測(cè)試。與預(yù)測(cè)插入率較低的變體相比，預(yù)測(cè)插入率較高的密碼子變體確實(shí)表現(xiàn)出較高的插入率，這凸顯了MinsePIE模型在密碼子優(yōu)化方面的優(yōu)勢(shì)。研究人員認(rèn)為，這種計(jì)算模型可以幫助人們選擇出最有效的序列寫(xiě)入基因組中。

圖2 預(yù)測(cè)prime插入效率

最后，對(duì)于如何提高prime editing系統(tǒng)的插入效率，研究人員提出了幾點(diǎn)建議。他們建議選擇胞嘧啶含量高且容易形成二級(jí)結(jié)構(gòu)的序列。對(duì)于使用U6啟動(dòng)子的pegRNA，盡量避免腺嘌呤的插入。對(duì)于小于14nt的序列，暫時(shí)抑制MMR或敲除MLH1將極大提高插入效率?？偟膩?lái)說(shuō)，這項(xiàng)工作增加了人們對(duì)短序列插入效率的理解，有望實(shí)現(xiàn)復(fù)雜的基因組工程和糾正各種致病突變。